ReptiFlow

Fiches d'élevage

Retour au catalogue
Geckos

Gecko de Garnot

Hemidactylus garnotii

Photo: Garnot's gecko (Hemidactylus garnotii) Pok Fu Lam · Charles J. Sharp · CC BY-SA 4.0 · Modifications et crédits

Ces guides donnent des informations générales sur les soins aux animaux et ne remplacent pas une évaluation vétérinaire. Si votre animal présente des symptômes ou si son état se dégrade, contactez un vétérinaire expérimenté en animaux exotiques.La traduction de cette fiche est en cours de révision et peut encore contenir des erreurs. Si une consigne vous semble ambiguë, consultez la version anglaise et demandez conseil à un professionnel compétent avant de l’appliquer.

Sources de la fiche d’élevageGecko Time — parthenogenetic gecko breeder reportsAutumn et al. — Journal of Experimental Biology: Hemidactylus garnotii (2006)Baines et al. (2016) — UV-Tool: metodo generale, non protocollo specificoScharf et al. (2015) — captive longevity datasetThe Reptile Database — Hemidactylus garnotii: taxonomy, distribution and scientific bibliographyMoritz et al. — Genetic diversity and history of Pacific island house geckosMerck Veterinary Manual — Nutrition in Lizards (2025)Merck Veterinary Manual — Reproductive diseases of reptilesBaines et al. 2016 · UV-Tool, species tableBaines 2024 · UVB lighting for reptilesMerck Veterinary Manual — Proximate Analysis of Whole PreyCDC — Reptiles and Amphibians: hygiene and cross-contaminationMerck Veterinary Manual — Management and Husbandry of Reptiles: quarantineAZA — Amphibian Husbandry Resource Guide: quarantine
TempératuresAir 24–29 °C · compte du détenteur
Enclos documenté31 × 31 × 31 cmconfiguration documentée pour les femmes 1–2 ; pas un minimum validéLongueur × profondeur × hauteur
HumiditéAucune humidité numérique spécifiée ; le compte utilise de la litière sèche et de l'eau disponible en permanence.
Taille adulteÉtude : 4,6–5,8 cm museau-ventre, à l'exclusion de la queue

Description

Hemidactylus garnotii est un gecko nocturne avec un corps brun gris aplati, répandu dans l'Indo-Pacifique tropical et introduit ailleurs. Il fréquente des troncs, des rochers et des bâtiments, souvent près de lumières attirant des insectes. Les populations sont parthénogénétiques : les femelles peuvent produire des oeufs sans s'accoupler.

LongévitéLa longévité est encore sous observation: les données captives rapportées par la source atteignent 1,3 an. Le record n'est ni une durée de vie moyenne ni une limite maximale. Il s'agit de l'enregistrement historique de l'échantillon publié, et non de la limite biologique de l'espèce.

Comportement

Utilise des murs et des supports verticaux : fournissez une couverture surélevée et contrôlez les issues de secours à travers de petits espaces.

Cohabitation

Des logements individuels avec des retraites librement accessibles ; préparer un logement séparé avant toute présentation.

Habitat et climat

Branches, panneaux de liège et plantes fournissent support et couverture. Comblez les espaces et fournissez un bol d’eau accessible.

Installation

Fixez les panneaux de liège à la structure et rendez le plat amovible sans les détacher.

Air 24–29 °C sur le compte de Boone ; pas de cible de surface distincte.

Eau propre, équipements dédiés et contrôles quotidiens des déchets.

Rendre la hauteur utilisable

Fixez les branches horizontales, inclinées et verticales à la structure, en utilisant des diamètres offrant une adhérence et des supports adaptés au poids adulte. Connectez-les de la branche d'éclairage exposée à la zone fraîche, en répartissant les supports sur les niveaux. Placez les entrées cachées à côté des branches ; ajoutez du feuillage le long des itinéraires sans bloquer la vaisselle, les portes ou les bouches d'aération.

Tests et accès

Connectez les sources de chaleur spécifiées à des thermostats compatibles et protégez-vous contre tout contact. Sécurisez les sondes conformément aux instructions de l'appareil ; mesurer l'air sur les sites de repos et les surfaces chauffées séparément avec des instruments indépendants. Dans les logements avec eau, vérifiez également la température et la qualité de l’eau : le thermostat d’une zone ne contrôle pas les autres.

Avec l'enceinte complète en marche, enregistrez les lectures de jour et de nuit et comparez-les avec la feuille. Testez les portes, les ouvertures de câbles et l’accès au nettoyage, en gardant les évents dégagés. Modifiez une variable à la fois et revérifiez après chaque ajustement.

Éclairage et UVB

Zone de Ferguson non attribuée avec suffisamment de précision à ce taxon.

Un pic UVI n’est pas vérifié pour cette entrée. L'ajustement de l'installation nécessite une cible sur l'espèce et l'origine identifiées ; l'aménagement doit prévoir des zones protégées et un accès volontaire à la lumière. Un numéro manquant ne signifie pas que les UVB sont inutiles.

UVB : recommandé à une intensité adaptée à l’espèce avec possibilité de retrait. Ils ne sont pas établis comme étant également indispensables pour chaque animal : la gestion de l’alimentation et l’identification des espèces restent une partie de l’évaluation.

UVA : recommandés dans le cadre du spectre diurne, y compris lorsque les UVB ne sont pas établis comme indispensables. La source UVB peut déjà le fournir ; une deuxième lampe n’est pas automatiquement nécessaire.

Tube UVB linéaire avec réflecteur, dimensionné une fois l'espèce UVI établie ; aucun pourcentage vérifié pour cette entrée.

Une minuterie donnant environ 12 heures de lumière et 12 heures d'obscurité est un point de départ pour la maintenance. Pendant la journée, l'animal choisit la lumière ou se retire ; les lumières s'éteignent la nuit. La saisonnalité et la reproduction nécessitent des adaptations décrites pour l'espèce et l'origine.

Distance lampe–dos : montage intérieur et au-dessus du grillageLampe intérieureLampe au-dessus du grillage16 cm26 cmd = distance source–dos, et non source–sol
Exemple avec hauteur 31 cm et hauteur animale 10 cm.Schéma non à l’échelle : les distances décrivent la disposition sans garantir un UVI ni une distance sûre pour chaque lampe. Vérifiez le modèle utilisé, le grillage et tous les points accessibles.

La lumière dans le quotidien de l’animal

Les lignes directrices pour H. turcicus ne valident pas de valeur pour H. garnotii. Répartissez l’écorce et le feuillage dans l’enceinte supérieure.

Un exemple d'aménagement dans l'enceinte

Pour réaliser le béton de disposition, prendre un boîtier mesurant 31 × 31 × 31 cm, en utilisant la première configuration dimensionnelle dans la feuille. Il s'agit d'un exemple de montage: conserver les conditions et toutes les alternatives fixées au minimum indiqué.

Dans un terrarium en bois avec éclairage intérieur, imaginez le tube à 26 cm du sol et le dos ou la tête à 10 cm du sol. La distance géométrique est donc de 16 cm. La branche ou la plateforme se situe sous cette hauteur de l’animal, selon sa taille. Placez l’éclairage d’un côté, avec un accès à des refuges entièrement à l’abri de la lumière.

Dans un terrarium en verre au toit grillagé, gardez la même hauteur pour l’animal et imaginez le tube à 5 cm au-dessus du grillage : la distance devient 26 cm. L’atténuation des UV par le grillage est variable ; un toit en verre ordinaire bloque les UVB. Augmenter le pourcentage seul ne suffit pas : mesurez sous le grillage et ajustez la hauteur, la puissance ou la disposition si nécessaire.

Ces distances décrivent l'exemple, et non un dégagement sûr pour chaque lampe. Établir d'abord une cible UVI vérifiée pour le taxon identifié. Respectez également l'autorisation minimale spécifiée pour le modèle utilisé. Revérifier avec l'ameublement, les gardes et le maillage installés, y compris les points les plus accessibles et la croissance animale.

Choisir et vérifier l'éclairage

Définissez d’abord le patch qui doit éclairer tout le corps et le chemin vers une retraite protégée. Pour une large zone, sélectionnez un tube linéaire avec réflecteur ; n'envisagez un compact que si son patch utile couvre le corps et laisse un dégradé accessible. Vérifiez le modèle, la puissance, le réflecteur et la distance de montage, puis comparez l'UVI mesuré avec l'espèce cible. Le pourcentage d’UVB sur l’étiquette ne peut à lui seul déterminer la distance et l’intensité.

Le contrôle décisif utilise un UVI-mètre face à la source à hauteur de l'animal. Vérifier le centre et les bords de la pièce exposée, les supports les plus hauts et les retraits, qui doivent permettre le retrait des UV. Répétez après avoir déplacé l'équipement, changé les lampes et la croissance des plantes. Sans compteur, utilisez les instructions et les mesures du fabricant pour la configuration exacte, y compris les dégagements de sécurité.

Lorsque les UVB ou les UVA sont absents

En cas d'élevage sans UVB, le D3 doit être apporté par le biais d'un régime alimentaire complet ou d'une supplémentation adaptée à l'espèce. Le calcium seul ne remplace pas le D3. Vérifiez les quantités existantes dans les régimes préparés et les multivitamines avant de combiner les produits ; la posologie dépend également du régime alimentaire et ne peut pas être dérivée des heures d'éclairage.

Les UVA contribuent à la perception et au comportement environnementaux et ne peuvent être remplacés par des vitamines ou du calcium. Une source UVB reptile émet normalement aussi des UVA : vérifiez son spectre déclaré. Si l'éclairage existant en est dépourvu, complétez l'installation avec une source adaptée ; une LED blanche ordinaire ne garantit pas les UVA et une lampe uniquement UVA ne fournit pas d'UVB.

Humidité et ventilation

L'humidité n'est pas définie numériquement pour cette configuration; fournir une literie sèche et de l'eau disponible en permanence. Placez l'hygromètre à côté des branches de repos, à l'extérieur de la pulvérisation d'eau directe, et comparez les lectures avec la zone froide. Enregistrer la tendance après l'entrée d'eau; si les relevés restent en dehors de la plage spécifiée, vérifier les évents de blocage du feuillage et les surfaces qui restent humides avant de régler la brume.

Alimentation

Hemidactylus garnotii est un petit chasseur nocturne. Conserver des cultures microfeeder et proposer de la nourriture le long des itinéraires couverts ; Le régime alimentaire des geckos frugivores ne remplace pas les insectes.

Aliments recommandés

Les catégories décrivent l’usage dans le régime : alternez les aliments de chaque catégorie sans les considérer comme une note nutritionnelle absolue.

AlimentRôle dans le régimeAvantages et limitesPréparation
Mouches des fruits cultivées, grillons à tête d'épingle et petites nymphes de gardonsChoix principauxLes proies doivent pouvoir être capturées même par les nouveau-nés ; des micro-alimentateurs variés réduisent la dépendance à une seule culture mais ont toujours besoin de calcium et de vitamines.Maintenez au moins deux cultures démarrées à des moments décalés. Saupoudrez de petites quantités de proies avec le complément et placez-les près d’un abri ; comptez les proies réellement consommées.
Vers à soie et larves de mouches soldats noiresÀ alternerDiversifier la texture et les nutriments. Les larves de mouches soldats noires peuvent fournir plus de calcium, mais leur teneur dépend de l'élevage : elles ne complètent pas l'ensemble de l'alimentation.Choisissez des larves nourricières de taille appropriée. Gardez les vers à soie sur leur nourriture spécifique ; consultez les instructions de supplémentation du fournisseur.
Insectes sauvages, lucioles et proies contaminéesÀ éviter / pas comme aliment de basePeut contenir des pesticides, des parasites ou des toxines ; une apparence saine ne garantit pas la sécurité.Utiliser des cultures nourricières traçables ; ne collectez pas d’insectes le long des routes ou des jardins traités.

Valeurs nutritionnelles comparables

Les protéines, les graisses, le calcium et le phosphore sont des pourcentages de matière sèche, hors eau ; la matière sèche elle-même représente un pourcentage du poids frais. Il s'agit de valeurs analytiques de référence compilées dans un tableau clinique, sans garantie du contenu de votre lot ni d'un classement universel. L'âge, l'élevage, l'alimentation et la supplémentation changent la composition. Ne les comparez pas directement avec les pourcentages d’aliments frais ou avec des régimes préparés déjà dilués. Des chiffres comparables ne sont pas fournis pour d’autres aliments.

InsecteMatière sècheProtéines brutesMatières grasses brutesCalcium / phosphoreCa:P
Mouche des fruitsDrosophila melanogaster30,9% du poids frais68% MS19% MS0,2 / 1,3% MS0,15:1

MS = matière sèche. Ca:P décrit le calcium par rapport au phosphore avant supplémentation : une proie riche en protéines peut rester pauvre en calcium. Les portions proposées restent celles de cette espèce et de son stade de vie.

Repas selon l’âge et la taille

Stade et tailleFréquenceQuantité par repas
Jeune : depuis la première alimentation jusqu'à ce que la croissance soit bien établieQuotidiennementProposez un petit lot de micro-nourricières à proximité de l'animal ; observez les captures pendant 5 minutes et ajoutez-en davantage seulement une fois le lot précédent consommé. Enregistrez le total ; ne laissez pas les insectes s’accumuler.
Juvéniles et subadultes : toujours en croissance sensibleQuotidiennementProposez un petit lot de micro-nourricières à proximité de l'animal ; observez les captures pendant 5 minutes et ajoutez-en davantage seulement une fois le lot précédent consommé. Enregistrez le total ; ne laissez pas les insectes s’accumuler.
Adultes : proche de la taille finale, la croissance a ralentiUn jour sur deuxProposez un petit lot de micro-nourricières à proximité de l'animal ; observez les captures pendant 5 minutes et ajoutez-en davantage seulement une fois le lot précédent consommé. Enregistrez le total ; ne laissez pas les insectes s’accumuler.

Adapter les portions

Pour évaluer la portion, comparez la quantité et le type d’aliments consommés à la croissance et à l’état corporel. Une pesée hebdomadaire des jeunes et mensuelle des adultes aide à suivre l’évolution. Adaptez progressivement la ration aux besoins de croissance ou aux réserves ; réduisez-la si l’état corporel indique un excès de poids ou s’il reste des aliments. Recherchez la cause d’une perte de poids inattendue ou d’un gonflement anormal au lieu de répondre uniquement par plus ou moins de nourriture.

Préparer et proposer les repas

Pendant les 24–48 heures précédant leur distribution, gardez les insectes dans leur récipient d’élevage avec un aliment complet pour insectes nourriciers et une hydratation sûre. Vérifiez l’accès à la nourriture et à l’eau et retirez les restes avariés. Sélectionnez ensuite des proies de la taille indiquée et ne préparez que le lot à offrir. Cette préparation, appelée gut-loading, améliore la qualité des proies ; le son ou la pomme de terre seuls ne corrigent pas les carences.

Au moment du repas, la proie doit être facile à avaler. Comme premier guide, choisissez des insectes pas plus larges que l’espace entre les yeux, puis adaptez la taille à la bouche et à la réponse de l’animal. Les proposer individuellement ou dans un plat résistant aux fuites vous permet de voir la consommation réelle et d'éliminer les restes.

Les quantités d'essai sont un point de départ pour un animal sain et actif à des températures correctes : enregistrez la consommation et l'évolution du poids, puis ajustez la ration. Ne vous nourrissez plus simplement parce qu’il continue de frapper ses proies.

Calcium et vitamines

Juste avant de les offrir, saupoudrez légèrement les insectes pauvres en calcium avec du calcium sans phosphore : les insectes doivent rester visibles, sans amas de poudre. Les insectes courants ont souvent un rapport calcium/phosphore défavorable ; alterner leurs espèces ne suffit pas à le corriger.

Choisissez un seul programme de supplémentation : du calcium seul pour les repas habituels et un complément multivitaminé adapté à l’espèce, aux intervalles indiqués sur l’étiquette. Notez le produit et les quantités de D3 et de vitamine A déjà présentes. N’ajoutez pas une seconde dose aux repas utilisant un produit combiné. Tenez compte des UVB mesurés pour convenir de l’apport oral de D3 ; les concentrations des produits ne sont pas interchangeables.

Soins quotidiens

Premiers jours

Tester le climat et le logement avant acquisition ; Enregistrez le poids et la consommation alimentaire sans perturber les retraites à plusieurs reprises.

Nettoyage

Vérifiez l’eau chaque jour et retirez les déchets, y compris sous les abris, avec des outils dédiés. Nettoyez les gamelles et renouvelez leur eau ; pour les bassins, suivez le programme de changement d’eau de l’espèce. Lavez-vous les mains ensuite. Gardez les animaux et le matériel à l’écart des cuisines et des lieux où se trouvent des aliments, utilisez des outils réservés à chaque enclos et lavez-vous les mains à l’eau courante et au savon après avoir manipulé les animaux, leur nourriture, l’eau du bac ou les accessoires. Placez les nouveaux arrivants en quarantaine séparée et convenez de sa durée et des contrôles avec un vétérinaire avant de les introduire auprès des animaux déjà présents.

Manipulation

Minimiser les transferts, soutenir le corps et permettre le retrait ; éviter de retenir la queue.

Contrôles

Contrôlez le poids, l’appétit, les mouvements et la peau ; consultez un vétérinaire connaissant l’espèce si les changements persistent. Des blessures ou une respiration difficile nécessitent un contact rapide, sans attendre leur persistance.

Reproduction

Hemidactylus garnotii: Vérifiez les crevasses et les tubes pour les oeufs à coquille dure, souvent pondus par paires sur des sites partagés. Gardez les supports avec différentes dates séparées. Ne manipuler que des œufs vraiment lâches; si une coquille adhère, conserver l'ensemble du support.

Sexe, maturité et préparation

Il s'agit d'une espèce parthénogénétique : identifiez correctement H. garnotii avant d'interpréter une colonie d'individus similaires. Conserver l’origine féminine et les tendances en matière de poids ; les présentations masculines sont inutiles.

Créez un dossier pour chaque animal reproducteur avec son identité, son origine, son âge documenté et ses poids antérieurs. Comparez la tendance du poids avec la croissance et la condition physique ; retarder les introductions pour les animaux encore en croissance rapide, en perte de poids ou récemment acquis. Utilisez les âges indiqués à titre indicatif parallèlement à ces contrôles. Si le sexe ne peut pas être identifié de manière fiable, faites-le évaluer par un personnel qualifié avant l'appairage.

Préparation et cycle saisonnier

Préparez-vous à la reproduction en gérant une colonie susceptible de pondre spontanément. Fournir plusieurs cachettes étroites et des repas complétés par de petits insectes ; n'utilisez pas une période de refroidissement des geckos du désert pour planifier la ponte.

Avant les rencontres, préparez et testez les enclos de la progéniture et disposez des premiers aliments. Vérifiez les registres pour l'alimentation régulière des adultes et leur bonne condition physique, puis vérifiez l'accès des zones exposées aux retraites. Si le protocole des espèces inclut des changements saisonniers, ajustez progressivement les paramètres et enregistrez la réponse. Enregistrez séparément l'emplacement et la lecture de l'air nocturne, des surfaces et des œufs ; garder l’eau disponible partout.

Reproduction sans mâle

Produire une progéniture ne nécessite pas de mâle. Enregistrez chaque femelle ou lignée clonale et ses couvées ; le montage entre femelles ne change pas ce mode de reproduction. Aménagez de l'espace pour la progéniture même lorsqu'aucune introduction n'est prévue.

Avant la ponte et le nid

Vérifiez les crevasses et les tubes pour détecter la présence d'œufs à coquille dure, souvent pondus par paires sur des sites partagés. Séparez les supports avec des dates différentes. Ne manipulez que des œufs véritablement en vrac ; si une coque adhère, conserver la totalité du support.

Maintenez un site de ponte adapté même sans mâle : les femelles peuvent produire des œufs non fécondés. Des efforts persistants sans ponte, une faiblesse ou un tissu sortant du cloaque nécessitent une évaluation vétérinaire rapide. N’attendez pas la date de ponte prévue si ces signes apparaissent. Ne comprimez pas l’abdomen, ne tirez pas sur les œufs et n’administrez pas de médicament pour déclencher la ponte sans instruction vétérinaire.

Incubation des œufs

Protégez le site d'incubation avec une couverture ventilée et mesurez son microclimat, en évitant la condensation directe ou la brumisation sur les œufs. Aucun intervalle température-durée suffisamment robuste, spécifique à l’espèce, n’est établi ici pour être utilisé comme compte à rebours.

Testez le système avant la ponte avec une sonde indépendante à hauteur d'œuf. Utilisez des récipients propres et étiquetés, fermés mais permettant l'échange d'air, avec de la place pour les œufs et les nouveau-nés. Conservez les œufs dans leur orientation d'origine et ne détachez pas les coquilles collées. Le milieu doit retenir l'humidité sans eau libre sur la coque ; vérifiez la condensation et la perte d'eau, en ajoutant de l'eau sur le bord plutôt que sur les œufs. Enregistrez quotidiennement la température et les événements sans ouverture inutile. Les durées sont des fenêtres : n'augmentez pas la chaleur pour respecter un rendez-vous.

Premiers repas et soins aux mineurs

Placez les jeunes dans un enclos vertical sans espace avec du liège et des feuilles fines. Offrez des grillons à tête d'épingle et des mouches des fruits complétés une fois la chasse commencée ; surveiller l’alimentation individuelle. Ne remplacez pas les insectes par une alimentation exclusivement à base de fruits.

Pendant les premières semaines, suivez chaque jeune : un groupe d'alimentation ne garantit pas que chaque individu mange. L'ingestion, les excréments et une brève pesée périodique révèlent la croissance et le moment où augmenter l'espace et la taille des proies. Un logement séparé est nécessaire si la compétition empêche l'alimentation ou si les différences de taille deviennent marquées. Le transfert vers un autre gardien peut suivre des repas indépendants répétés et documentés.

Récupération féminine

Après la reproduction, fournir de l'eau et une alimentation équilibrée habituelle, initialement en portions gérables ; surveiller le poids, l’activité et le retour de l’appétit. Gardez les suppléments et l’éclairage conformes au guide d’alimentation. Évitez les introductions supplémentaires jusqu'à ce que la condition précédente se soit rétablie ; des couvées ultérieures peuvent avoir lieu sans autre accouplement. Des efforts persistants, une faiblesse ou des tissus saillants nécessitent une attention vétérinaire, sans comprimer l'abdomen.

Équipement et exemple de journal

Placez le nid à un endroit contrôlable sans démonter le terrarium. Indiquez sur les récipients l’identité de la femelle et la date de ponte, puis préparez le substrat indiqué ; pour les œufs fixés à un support, installez plutôt des protections sur place sans les détacher. Si vous utilisez un incubateur, installez un thermostat et une sonde indépendante, et testez-le avant la ponte. Mettez également en service les terrariums des jeunes et préparez une balance et les premiers aliments, en gardant de la place pour les pontes suivantes.

Pour suivre la reproduction de Hemidactylus garnotii, tenez un journal avec les dates réelles. Notez d’abord l’identité, le poids et l’état corporel des adultes, puis les rencontres observées, la ponte ou la naissance et les conditions de développement. Après l’éclosion ou la naissance, consignez le premier repas effectivement accepté et la croissance de chaque jeune, tout en suivant la récupération de la femelle. Ces observations aident à reconnaître les tendances de votre lignée sans transformer des durées approximatives en échéances impératives.